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肝性骨营养不良(HOD)是一种严重的代谢性骨病,与慢性肝病密切相关,其发病率随着代谢功能障碍相关性脂肪性肝炎(MASH)在全球范围内的激增而迅速攀升。目前的临床干预措施仍然分散,无法同时解决上游的肝脏脂毒性和下游的骨骼退化问题。本文中,我们设计了一种铜掺杂生物活性玻璃(CuBGs),作为一种多功能离子治疗纳米平台,利用其天然的肝脏趋向性,通过靶向重编程肝-骨轴,同步改善MASH-HOD的病理状态。CuBGs通过递送局部治疗性离子,促进肝脏代谢的显著恢复:它们增强葡萄糖耐受性,恢复线粒体氧化磷酸化(OXPHOS),从而有效抑制肝内甘油三酯的积累,并消除活性氧(ROS)驱动的炎症反应。至关重要的是,这种肝脏拯救机制通过显著上调肝因子卵磷脂胆固醇酰基转移酶(LCAT)的分泌,重新激活了肝脏与骨骼之间的内分泌相互作用。全身性LCAT的恢复可直接刺激成骨细胞生成和新骨形成,从而在不发挥传统抗骨吸收剂作用的情况下,有效逆转MASH诱导的骨小梁丢失。这种双器官调节机制全面改善了MASH-HOD中相互关联的多器官微环境,且不会引起全身毒性。最终,这种生物活性玻璃介导的铜递送系统建立了一种新型的、高度可扩展的离子纳米疗法策略,为复杂的肝骨共病提供了一种前景广阔的综合治疗策略。
该研究以题为“Bioactive glasses-mediated ion therapy ameliorates hepatic osteodystrophy by reprogramming the liver-bone axis”发表在Bioactive Materials上。

图1
CuBGs的制备及治疗机制示意图。
图2
CuBGs的合成、表征及小鼠体内生物分布。(A) BGs的SEM图像。比例尺=100 nm。(B) 多孔BGs的平均直径。(C) CuBGs的SEM图像。比例尺=100 nm。(D) 多孔CuBGs的平均直径。(E和F) BGs的TEM图像(E)和EDX元素分布图(F)。(G和H) CuBGs的TEM图像(G)和EDX元素分布图(H)。(I和J) MBGNs和Cu-MBGNs的XPS谱图(I)及Cu 2p3/2和Cu 2p1/2峰的高分辨扫描(J)。(K) CuBGs在无血清DMEM中7天内Cu离子的累积释放曲线(n=3)。(L和M) BGs和CuBGs中Si (L)和Ca (M)离子的累积释放曲线(n=3)。(N和O) 小鼠经尾静脉注射Cy5标记的BGs/CuBGs。(N) 代表性IVIS图像显示注射后8小时BGs/CuBGs在主要器官中的生物分布。(O) 不同组主要器官荧光强度的定量比较。
图3
CuBGs在MASH中改善肝损伤并通过肝-骨轴在体外促进成骨细胞分化。(A-C) 原代肝细胞在DMEM(对照)中培养或用0.5 mM棕榈酸刺激建立体外MASH模型。PA处理期间,细胞同时用生理盐水、BGs或CuBGs(0.01、0.1或1 mg/mL)处理24小时。(A) 培养基中ALT水平(n=6)。(B) 培养基中AST水平(n=6)。(C) 原代肝细胞内甘油三酯含量(n=6)。(D和E) 原代肝细胞在DMEM中作为正常对照培养或用0.5 mM PA刺激建立体外MASH模型。PA刺激期间,细胞同时用NS、BGs(0.1 mg/mL)或CuBGs(0.1 mg/mL)处理24小时。代表性油红O染色图像(D)及油红O阳性面积的定量分析(E)。比例尺=100 μm,n=3。(F和G) 通过实时定量PCR测量指定处理后原代肝细胞中Il-1β (F)和Tnf-α (G)的相对mRNA表达。每组n=3个生物学重复。(H) 原代肝细胞用FITC标记的BGs或CuBGs处理8小时,细胞内FITC标记BGs或CuBGs(绿色)的代表性图像。细胞骨架用罗丹明鬼笔环肽染色(红色)。细胞核用DAPI染色(蓝色)(比例尺=20 μm)。(I) Transwell共培养实验示意图。(J和K) 不同组MC3T3-E1细胞中Runx2和Sp7 mRNA表达(n=3)。数值为3-5个生物学重复和1个技术重复的均值。数据以均值±SEM表示,统计学显著性通过单因素方差分析进行。P < 0.05,P < 0.01,P < 0.001。
图4
CuBGs改善MASH-HOD小鼠模型中的肝损伤。(A) 实验设计示意图(上)及注射溶液照片(下)。小鼠喂食正常饮食或高脂甲硫氨酸-胆碱缺乏饮食。在2周实验期内,HFMCD喂养小鼠每隔一天接受尾静脉注射生理盐水、BGs或CuBGs(颗粒悬浮液:5 mg/mL;10 mg/kg体重),而ND小鼠按相同时间表接受等体积(50 μL)NS。治疗开始后第15天处死小鼠收集样本。(B) 实验期间小鼠体重变化。(C) 肝脏重量。(D) 肝/体重比。(E) 肝脏TG水平。(F) 代表性肝脏大体图像(比例尺=1 cm)、H&E染色肝脏组织学分析(比例尺=100 μm)及油红O染色(比例尺=100 μm)。(G和H) 不同组血清ALT (G)和AST (H)水平。(I) 小鼠肝组织F4/80染色(上)和α-SMA染色(下)的代表性免疫组化图像(比例尺=100 μm)。(J) 相对肝脏Cd36 mRNA表达。(K和L) 肝脏中CD36的代表性免疫组化染色(K)及定量表达(L)(比例尺=100 μm)。数据以均值±SEM表示(每组n=5只小鼠)。统计学显著性通过单因素方差分析进行。P < 0.05,P < 0.01,P < 0.001。

图5
CuBGs治疗预防MASH-HOD小鼠模型中的骨丢失。动物分组和治疗方案与图4所述相同。(A) 股骨骨小梁的代表性3D μCT图像(比例尺=400 μm)。(B-E) 骨密度(BMD, B)、骨体积(BV, C)、组织体积(TV, D)和骨体积分数(BV/TV, E)的定量分析。(F和G) 骨钙素(OCN, F)的代表性免疫组化染色及每骨表面Ocn阳性细胞数的定量分析(G)(比例尺=10 μm)。(H) 通过实时定量PCR测定的成骨细胞标志物Runx2和Sp7的相对mRNA表达。(I) RUNX2蛋白水平的代表性蛋白质印迹。(J和K) RUNX2的代表性免疫组化染色(J)及定量分析(K)(比例尺=400 μm)。(L和M) 代表性抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)染色(L)(比例尺=200 μm)及每骨表面破骨细胞表面的定量分析(M)。ND:正常饮食,NS:生理盐水,HFMCD:高脂甲硫氨酸-胆碱缺乏饮食。数据以均值±SEM表示(每组n=5只小鼠),统计学显著性通过单因素方差分析进行。P < 0.05,P < 0.01,P < 0.001。
总结
肝性骨营养不良与慢性肝病相关,现有干预无法同时解决肝脏脂毒性和骨骼退化。我们设计铜掺杂生物活性玻璃作为离子治疗纳米平台,利用其肝脏趋向性递送治疗性离子,增强葡萄糖耐受、恢复线粒体氧化磷酸化,抑制肝内甘油三酯积累和活性氧驱动的炎症。肝脏功能恢复后,肝因子LCAT分泌显著上调,重新激活肝-骨内分泌交互,直接刺激成骨细胞生成和新骨形成,在不使用传统抗骨吸收剂的情况下逆转骨小梁丢失,且无全身毒性。
参考文献:
DOI:10.1016/j.bioactmat.2026.08.028
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