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纳米酶作为具有模拟酶性质的功能纳米材料,既能克服天然酶稳定性差、制备成本高等缺点,又具有纳米材料的可设计性、多功能性、可操纵性及可应用性[1]。东南大学顾宁、张宇课题组在纳米酶领域取得了相关研究进展,例如氧化铁、氧化钴、普鲁士蓝、金纳米酶的催化机制研究、纳米酶的体外检测、成像、细胞保护及肿瘤治疗、纳米酶相关国家标准等。 01 氧化铁纳米颗粒pH依赖的类双酶活性该研究利用电子自旋共振技术(ESR)首次发现氧化铁纳米颗粒(IONPs)具有pH依赖的类双酶活性:在酸性条件下,IONPs能够与H2O2反应,生成具有高毒性的羟自由基(·OH),表现出类过氧化物酶(POD)活性;在中性条件下,能够催化H2O2的歧化反应,分解为无毒的H2O和O2,表现类过氧化氢酶(CAT)活性[2]。该研究证明IONPs在细胞中的分布及细胞内微环境是影响其细胞毒性的重要因素,即:当IONPs定位于细胞溶酶体中,将产生较强的毒性作用;定位于细胞质中则具有较好的解毒作用(图1)。因此,溶酶体逃逸策略是一种有望降低IONPs给药中长期毒性的有效方法。 图1:氧化铁纳米颗粒pH依赖的类POD、CAT活性
02 四氧化三钴纳米颗粒类多酶活性及电荷转移催化机制
本研究证明了四氧化三钴纳米颗粒(Co3O4 NPs)具有类CAT、POD和SOD 酶活性[4]。利用电子自选共振技术研究其催化机制,表明Co3O4 NPs的类POD活性不遵循类芬顿反应产生·OH,而是Co3+/Co2+较高的氧化还原电位使Co3O4 NPs具有较强的氧化性,可作为电子传递介质将TMB的电子直接转移给H2O2(图2)。在中性条件下,H2O2倾向于缓慢分解,Co3O4 NPs有助于加速这一过程,因为H2O/O2的氧化还原电位很低,H2O2很容易被Co3+氧化。基于Co3O4NPs较强的类POD酶活性,作者设计了一种新的免疫组化方法,将Avastin抗体偶联到Co3O4 NPs表面,获得的偶联物用于检测肿瘤组织中过表达的血管内皮生长因子(VEGF)。
图2:Co3O4 NPs 类POD酶活性催化机制
03 普鲁士蓝纳米颗粒类多酶活性及活性氧清除功能
活性氧(ROS)的产生是纳米材料毒性的重要机制之一。研究发现普鲁士蓝纳米粒颗粒(PBNPs)具有类POD、CAT、超氧化物歧化酶(SOD)等多酶活性,并能够有效清除ROS[3]。机制研究表明,与氧化铁纳米颗粒类芬顿反应产生·OH不同,PBNPs能够抑制·OH的生成。作者首次推测,PBNPs的类多酶样活性可能是由于PBNPs丰富的氧化还原电位使其成为高效的电子转运体(图3)。
为了研究PBNPs清除ROS的能力,建立了一系列的体外ROS生成模型,包括化学药物刺激、脂多糖诱导炎症、紫外线照射、神经细胞缺氧复氧等,PBNPs加入均能清除产生的ROS,有效抗氧化并提高细胞活性,并且具有剂量依赖性。同时采用脂多糖诱导建立了小鼠炎症模型,同样表明了普鲁士蓝纳米颗粒能够抑制炎症反应。
图3:PBNPs 类多酶活性及其催化机制
纳米酶缺乏对催化底物的选择性一直以来是制约纳米材料在实际应用中代替天然酶的重要因素之一,同样也是国内外科研人员致力于解决的重要问题。为此,采用氨基苯硼酸在碱性条件下结合葡萄糖分子的邻位羟基,将葡萄糖分子印记在金纳米颗粒(AuNPs)表面,经洗脱后,在AuNPs表面留下葡萄糖分子口袋。
随后氨基苯硼酸聚合形成分子印迹壳层,这种策略实现了AuNPs作为类氧化酶对底物葡萄糖的选择性(图4)。此外,加入具有供氧能力的全氟溴辛烷能够进一步加强AuNPs的催化活性。与单纯的AuNPs相比,本工作制备的具有葡萄糖分子印迹壳层的载氧AuNPs的催化效率提升了270倍,并成功用于实际样品(饮料、血液)中葡萄糖含量的检测[5]。
05 普鲁士蓝纳米酶用于超声-磁共振双模态成像
ROS诱导的过量H2O2的产生可以作为一种潜在的诊断标记物,用于判断多种病理状态的存在和进展。根据PBNPs在中性条件的类CAT酶活性能够催化H2O2分解为O2的特性,开发了基于PBNPs的高灵敏度、高分辨率的超声和磁共振双模成像探针,用于体内/外诊断H2O2(图5)[6]。氧气泡的生成改变了氧化应激组织的声阻抗,使PBNPs作为超声造影剂来增强超声成像效果。同时,纳米颗粒表面Fe3+中心易于与H2O进行交换及具有顺磁性的氧气泡能够缩短T1弛豫时间,使PBNPs还能作为T1磁共振造影剂。
图7:氧化铁纳米颗粒类过氧化物酶活性测量原理图
参考文献:
[1] Dong H, Fan Y, Zhang W, et al. CatalyticMechanisms of Nanozymes and Their Applications in Biomedicine[J]. BioconjugateChemistry, 2019,30(5): 1259-1584.
[2] Chen Z, Yin J J, Zhou Y T, et al. DualEnzyme-like Activities of Iron Oxide Nanoparticles and Their Implication forDiminishing Cytotoxicity[J]. ACS Nano, 2012, 6(5): 4001-4012.
[3] Zhang W, Hu S, Yin J J, et al. Prussian BlueNanoparticles as Multienzyme Mimetics and Reactive Oxygen SpeciesScavengers[J]. Journal of the American Chemical Society, 2016, 138(18): 5860-5865.
[4] Dong J, Song L, Yin J J, et al. Co3O4Nanoparticles with Multi-Enzyme Activities and Their Application inImmunohistochemical Assay[J]. ACS Applied Materials & Interfaces, 2014,6(3): 2014, 6: 1959-1970.
[5] Fan L, Wu H, Lou D, et al. A NovelAuNPs-based Glucose Oxidase Mimic with Enhanced Activity and SelectivityConstructed by Molecular Imprinting and O2-Containing NanoemulsionEmbedding[J]. Adv. Mater. Interfaces, 2018, 5, 1801070.
[6] Yang F, Hu S, Zhang Y, et al. A HydrogenPeroxide-Responsive O2 Nanogenerator for Ultrasound andMagnetic-Resonance Dual Modality Imaging[J]. Advanced Materials, 2012, 24(38): 5205-5211.
[7] Wu H, Liu L, Song L, et al. Enhanced TumorSynergistic Therapy by Injectable Magnetic Hydrogel Mediated Generation ofHyperthermia and Highly Toxic Reactive Oxygen Species[J]. ACS Nano, 2019,13(12):14013-14023.
[8]国家标准:《纳米技术氧化铁纳米颗粒类过氧化物酶活性测量方法》GB/T 37966-2019.
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