01/产品介绍
游离 DNA 又称游离循环核酸,指循环血液中游离于细胞外的 DNA,这类 DNA 片段大小通
常不超过 800Bp,主要存在于血清及血浆中。游离 DNA 片段在疾病的早期诊断、预后、监
测等方面具有重要潜在价值。本试剂盒专为提取游离 DNA 而设计,基于硅基磁珠特异性吸
附 DNA 的原理,在各种提取组分中实现除杂和富集,得到纯净高质量游离 DNA 分子,适
用于 PCR 反应,qPCR 检测,二代测序(NGS)等下游分子操作。
02/产品优势
1. 普适性强,适用于新鲜或冷冻抗凝血清、血浆及无细胞体液样本提取
2. 性能稳定,提取过程无毒
3. 质量高,纯度好
04/保存条件
室温保存 1 年有效。
05/自备试剂
异丙醇,无水乙醇
06/注意事项
1. 初次使用前,请向 BufferCW1 和 BufferCW2 中加入相应体积的无水乙醇。
2. 每次使用前摇匀各瓶中溶液,使体系均一,保证提取效果。
3. 样品应避免反复冻融(一般不超过 3 次),否则会降低提取质量。
4. 样品短期可 4℃保存一周,-80℃长期保存。
5. 溶液放置一段时间后若产生沉淀,可 37℃水浴溶解,不影响效果。
6. 使用无菌离心管和枪头,避免外源核酸酶污染。
07/使用方法
1. 取 600ul 样品于 1.5ml 洁净离心管中。
2. 向其中加入 400ul Buffer KD 和 20ul Proteinase K,漩涡混匀 30s。
3.68℃孵育(水浴和金属浴均可)10min,每间隔2-3min漩涡混匀5s。
4.加入200ul异丙醇漩涡混匀20s,加入20ul磁珠悬液(注意:加入前漩涡混匀磁珠悬液)。
5.漩涡混匀30smin,静置1min。
6.重复操作步骤5两次。
7.转移离心管置于磁力架上,进行磁分离后,小心吸去液体(注意:不要吸走磁珠)。
8.从磁力架上取下离心管,加入800ulBufferCW1,漩涡混匀2min,进行磁分离,吸去除
磁珠以外的液体(注意:不要吸走磁珠)。
9.重复操作步骤8一次。
10.从磁力架上取下离心管,加入600ulBufferCW2,漩涡混匀2min,进行磁分离,吸去除
磁珠以外的液体(注意:不要吸走磁珠)。
11.重复操作步骤10一次。
12.转移离心管于磁力架上,室温晾干8-10min(注意:晾干时间不可超过10min,否则会
影响基因组质量)。
13.取下离心管,加入80-150ulBufferCTE,用移液枪吹吸混匀20次,65℃孵育8min,期
间吹吸混匀2次。
14.转移离心管置于磁力架上,进行磁分离,转移除磁珠以外的液体于一新的离心管中,
-20℃保存。
08/常见问题及应对策略
◆获得的基因组DNA纯度低
1.建议增加BufferCW1和BufferCW2洗脱用量100ul。
2.选用新鲜样本进行提取。
3.洗涤过程中,磁珠未被充分打散,有蛋白聚集,建议增加吹吸或漩涡混匀的力度和时间。
4.用BufferCTE洗脱前未充分晾干,有少量乙醇残留。
◆获得的基因组DNA浓度低
1.建议更换新鲜的样本进行提取。
2.减少BufferCTE的用量,或延长65℃孵育时间至15min。
3.洗脱过程中,磁珠未充分磁分离就转移液体,造成磁珠损失。
4.加大磁珠5-10ul,以增加吸附力度,从而增大得率。
5.晾干时间超过10min,磁珠太过于干燥,洗脱效率下降。
6.用BufferTE洗脱过程中未充分打散磁珠团块,造成基因组释放不充分。
◆提取过程中出现磁珠结团现象
在磁珠法提取过程中,由于大量染色质核酸吸附在磁珠表面,绝大多数情况下会出现磁珠结
团的现象。此现象可作为核酸含量的判别指标,一般来说,有结团说明样本良好,吸附过程
顺利高效,只要操作者在洗涤和洗脱过程中,充分打散团块就可得到理想的基因组DNA分
子。